ВВЕДЕНИЕ В КУЛЬТУРУ IN VITRO БЕССМЕРТНИКА ПЕСЧАНОГО (HELICHRYSUM ARENARIUM (L.) MOENCH.)
Main Article Content
Authors
Д.Н. Жарасова
РГП «Мангышлакский экспериментальный ботанический сад» КН МОН РК, Республика Казахстан, 130000, г.Актау, 10 микрорайон
Н.Ә. Төлеп
РГП «Мангышлакский экспериментальный ботанический сад» КН МОН РК, Республика Казахстан, 130000, г.Актау, 10 микрорайон
Abstract
Сохранение генофонда растительного мира и введения в культуру редких видов, в том числе и реликтовых видов, является актуальной задачей современности. Эта задача осуществляется, с одной стороны, при помощи разработки методов учета и охраны редких и исчезающих видов растений, с другой — за счет отработки приемов выращивания этих растений in situ и in vitro.
Бессмертник песчаный Helichrysum arenarium (L.) Moench - ксерофитный и гелиофильный вид из семейства астровые (Asteraceae), находящийся на грани исчезновения. Бессмертник песчаный (другое название цмин) является фармакологически важным лекарственным растением, широко используется в официальной и народной медицине, внесен в отечественную фармакопею.
В качестве исходного материала для введения в культуру in vitro использовали семена бессмертника песчаного. Растительный материал промывали в мыльном растворе и проточной воде, обрабатывали 70 %- ным этанолом, затем стерилизовали в растворе отбеливателя «Белизна» (1:1) с последующим промыванием в стерильной воде, а затем в 10 %-ном растворе перекиси водорода (H2О2). Концентрацию стерилизующего раствора и время экспозиции подбирали экспериментально.
Метод культуры in vitro проводили на среде Woody Plant Medium (WPM), с уровнем рН 5,6–5,8. К стандартному минеральному составу среды были добавлены витамины. Дальнейшее культивирование проводили при 24-25 °C, световом периоде 16 ч и освещенности 3–4 тыс. люкс. Для поддержания пролиферирующих культур каждые 2–3 недели экспланты пересаживали на свежую питательную среду. Учет количества проросших семян проводили через каждые 7–10 дней в течение четырех месяцев культивирования на стеллажах световой. Оценка полученных чистых культур (стерильных) проводили по количеству выживших эксплантов.
Жизнеспособный асептический материал H. arenarium удалось получить после последовательной стерилизации в 70 % этаноле (1 мин), «Белизне» (1:1), (15 мин) и 10 % растворе перекиси водорода (7 мин). Признаки прорастания у семян появились через 1–2 недели культивирования, всхожесть семян составила 100 % .
Образовавшиеся при стерильном проращивании микропобеги были поделены на экспланты, а затем снова помещены на питательную среду WPM. Полученные микропобеги успешно укоренялись на безгормональной питательной среде.
Таким образом, получены асептические культуры H. arenarium и они обладали регенеративной способностью. Выявлено, что оптимальной питательной средой для введения в культуру in vitro являлась среда WPM. Оптимизированы условия стерилизации семян для получения жизнеспособных микропобегов.